PRINCIPE

La membrane du dispositif de test est recouverte d'antigène du rotavirus du groupe A dans la zone de test et d'anticorps IgG anti-lapin de chèvre dans la zone de contrôle. Les tampons de marquage sont préalablement recouverts d'anticorps anti-rotavirus du groupe A et d'IgG de lapin marqués par fluorescence. Lors d'un test positif, le rotavirus présent dans l'échantillon se combine avec l'anticorps anti-rotavirus du groupe A marqué par fluorescence, formant un complexe immun. Sous l'effet de l'immunochromatographie, ce complexe migre vers le papier absorbant. Lorsqu'il atteint la zone de test, il se combine avec l'anticorps anti-rotavirus du groupe A fixé, formant un nouveau complexe. En cas de test négatif, l'échantillon ne contient pas d'antigène du rotavirus du groupe A, empêchant ainsi la formation de complexes immuns ; aucune ligne rouge n'apparaît alors dans la zone de détection (T). Que le rotavirus du groupe A soit présent ou non dans l'échantillon, les IgG de souris marquées au latex sont chromatographiées dans la zone de contrôle de qualité (C) et capturées par l'anticorps IgG anti-souris de chèvre. Une ligne rouge apparaît alors dans la zone de contrôle de qualité (C). La ligne rouge représente la norme apparaissant dans la zone de contrôle qualité (C) pour vérifier la quantité d'échantillons et la normalité du processus de chromatographie. Elle sert également de norme de contrôle interne pour les réactifs.

Procédure de test :

1. Il convient de prélever des échantillons chez les patients symptomatiques. Selon les données disponibles, l'excrétion maximale de rotavirus dans les selles des patients atteints de gastro-entérite survient 3 à 5 jours après le début de la maladie et 3 à 13 jours après l'apparition des premiers symptômes. Si le prélèvement est effectué longtemps après le début de la diarrhée, la quantité d'antigènes peut être insuffisante pour obtenir une réaction positive.

2. Les échantillons doivent être recueillis dans un récipient propre, sec et étanche ne contenant ni détergents ni conservateurs.

3. Chez les patients ne présentant pas de diarrhée, le poids des selles prélevées doit être d'au moins 1 à 2 grammes. Chez les patients souffrant de diarrhée, si les selles sont liquides, veuillez prélever au moins 1 à 2 ml de liquide. Si les selles contiennent beaucoup de sang et de mucus, veuillez effectuer un nouveau prélèvement.

4. Il est recommandé d'analyser les échantillons immédiatement après leur prélèvement. À défaut, ils doivent être envoyés au laboratoire dans les 6 heures et conservés entre 2 et 8 °C. Si les échantillons n'ont pas été analysés dans les 72 heures, ils doivent être conservés à une température inférieure à -15 °C.

5. Utiliser des selles fraîches pour les tests, et des échantillons de selles mélangés à un diluant ou à de l'eau distillée.